Сравнение патогенного потенциала изолятов Klebsiella pneumonia, выделенных из кишечной микробиоты человека, из поверхностных и сточных вод
- Авторы: Пай Г.В.1, Ракитина Д.В.1, Панькова М.Н.1, Юдин С.М.1, Загайнова А.В.1
-
Учреждения:
- ФГБУ «Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Федерального медико-биологического агентства
- Выпуск: Том 99, № 12 (2020)
- Страницы: 1360-1364
- Раздел: ГИГИЕНА ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ
- Статья опубликована: 15.12.2020
- URL: https://rjsocmed.com/0016-9900/article/view/638401
- DOI: https://doi.org/10.47470/0016-9900-2020-99-12-1360-1364
- ID: 638401
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. Klebsiella pneumoniae является условно патогенным возбудителем, который отвечает за возникновение внутрибольничных и внебольничных инфекций, присутствует в почвенной и водной среде, но вирулентный потенциал изолятов K. pneumoniae из окружающей среды в значительной степени неизвестен. Поскольку главной угрозой загрязнения внешней среды в настоящий момент считаются изоляты с множественной устойчивостью к антибиотикам, то основная масса исследований K. pneumoniae из окружающей среды посвящена выявлению именно таких изолятов (в основном продуцентов бета-лактамаз).
Материал и методы. В работе 42 изолята K. рneumoniae, выделенных из сточных вод, 19 – из поверхностных водных источников и 63 изолята из кишечной микробиоты «практически здоровых» людей проанализированы методом ПЦР на наличие потенциальных генов вирулентности (ybts, kfu, rmpA, mrkD, K2, alls, magA, iutA).
Результаты. В результате анализа выявлена статистически значимая неоднородность исследуемых выборок. Изоляты, выделенные из сточных вод, показали наибольшую долю и спектр вирулентных генов (8 из 8). Изоляты из поверхностных источников статистически оказались неразличимы с изолятами, выделенными из кишечной микробиоты «практически здоровых» людей, при этом и в этих группах выявлялись патогенные детерминанты.
Заключение. Изоляты К. pneumoniae из поверхностных источников статистически не различались с изолятами из кала «практически здоровых», хотя часть вирулентных генов выявлена и в этих изолятах. Сточные воды могут служить резервуаром для высоковирулентных представителей К. pneumoniae, в большей степени, чем кишечник здоровых людей, могут служить риском для здоровья населения. Необходимы дополнительные исследования с более объёмными выборками и широким спектром вирулентных признаков для прогнозирования распространения гипервирулентных штаммов.
Об авторах
Г. В. Пай
ФГБУ «Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Федерального медико-биологического агентства
Автор, ответственный за переписку.
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0001-7086-0899
Россия
Д. В. Ракитина
ФГБУ «Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Федерального медико-биологического агентства
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0003-3554-7690
Россия
М. Н. Панькова
ФГБУ «Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Федерального медико-биологического агентства
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-9133-3665
Россия
С. М. Юдин
ФГБУ «Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Федерального медико-биологического агентства
Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-7942-8004
Россия
Анжелика Владимировна Загайнова
ФГБУ «Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Федерального медико-биологического агентства
Email: angelikaangel@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4772-9686
Канд. биол. наук, зав. лаб. микробиологии и паразитологии ФГБУ «ЦСП» ФМБА России, 119121, Москва.
e-mail: angelikaangel@mail.ru
РоссияСписок литературы
- Podschun R., Ullmann U. Klebsiella spp. as nosocomial pathogens: epidemiology, taxonomy, typing methods, and pathogenicity factors. Clin. Microbiol. Rev. 1998; 11(4): 589-603.
- Struve C., Krogfelt K.A. Pathogenic potential of environmental Klebsiella pneumoniae isolates. Environ. Microbiol. 2004; 6(6): 584-90. https://doi.org/10.1111/j.1462-2920.2004.00590.x
- Podschun R., Pietsch S., Höller C., Ullmann U. Incidence of Klebsiella species in surface waters and their expression of virulence factors. Appl. Environ. Microbiol. 2001; 67(7) 3325-7. https://doi.org/10.1128/aem.67.7.3325-3327.2001
- Choby J.E., Howard-Anderson J., Weiss D.S. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae -clinical and molecular perspectives (Review). J. Intern. Med. 2020; 287: 283-300. https://doi.org/10.1111/joim.13007
- Lightfoot N. Bacteria of potential health concern. In: World Health Organization (WHO). Heterotrophic Plate Counts and Drinking-Water Safety. London; 2003: 61-79.
- Matsen J.M., Spindler J.A., Blosser R.O. Characterization of Klebsiella isolates from natural receiving waters and comparison with human isolates. Appl. Microbiol. 1974; 28(4): 672-8.
- Vasaikar S., Obi L., Morobe I., Bisi-Johnson M. Molecular characteristics and antibiotic resistance profiles of Klebsiella isolates in Mthatha, Eastern Cape Province, South Africa. Int. J. Microbiol. 2017; 2017: 8486742. https://doi.org/10.1155/2017/8486742
- Kim S.H., Wei C.I., Tzou Y.M., An H. Multidrug-resistant Klebsiella pneumoniae isolated from farm environments and retail products in Oklahoma. J. Food Prot. 2005; 68(10): 2022-9. https://doi.org/10.4315/0362-028x-68.10.2022
- Lee C.R., Lee J.H., Park K.S., Jeon J.H., Kim Y.B., Cha C.J., et al. Antimicrobial resistance of hypervirulent Klebsiella pneumoniae: epidemiology, hypervirulence-associated determinants, and resistance mechanisms. Front. Cell Infect. Microbiol. 2017; 7: 483. https://doi.org/10.3389/fcimb.2017.00483
- Fung C.P., Lin Y.T., Lin J.C., Chen T.L., Yeh K.M., Chang F.Y., et al. Klebsiella pneumoniae in gastrointestinal tract and pyogenic liver abscess. Emerg. Infect. Dis. 2012; 18(8): 1322-5. https://doi.org/10.3201/eid1808.111053
- Russo T.A., Olson R., Macdonald U., Metzger D., Maltese L.M., Drake E.J., et al. Aerobactin mediates virulence and accounts for increased siderophore production under iron-limiting conditions by hypervirulent (hypermucoviscous) Klebsiella pneumoniae. Infect. Immun. 2014; 82(6): 2356-67. https://doi.org/10.1128/IAI.01667-13
- Compain F., Babosan A., Brisse S., Genel N., Audo J., Ailloud F., et al. Multiplex PCR for detection of seven virulence factors and K1/K2 capsular serotypes of Klebsiella pneumoniae. J. Clin. Microbiol. 2014; 52(12): 4377-80. https://doi.org/10.1128/JCM.02316-14
- Анализ произвольных таблиц сопряженности с использованием критерия хи-квадрат. Available at: https://medstatistic.ru/calculators/calchit.html
- Yu W.L., Ko W.C., Cheng K.C., Lee C.C., Lai C.C., Chuang Y.C. Comparison of prevalence of virulence factors for Klebsiella pneumoniae liver abscesses between isolates with capsular K1/K2 and non-K1/K2 serotypes. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 2008; 62(1): 1-6. https://doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2008.04.007
- Holden V.I., Breen P., Houle S., Dozois C.M., Bachman M.A. Klebsiella pneumoniae siderophores induce inflammation, bacterial dissemination, and HIF-1α stabilization during pneumonia. mBio. 2016; 7(5): e01397-16. https://doi.org/10.1128/mBio.01397-16
- Jagnow J., Clegg S. Klebsiella pneumoniae MrkD-mediated biofilm formation on extracellular matrix- and collagen-coated surfaces. Microbiology. 2003; 149(Pt. 9): 2397-405. https://doi.org/10.1099/mic.0.26434-0
- Murphy C., Clegg S. Klebsiella pneumoniae and type 3 fimbriae: nosocomial infection, regulation and biofilm formation. Future Microbiol. 2012; 7(8): 991-1002. https://doi.org/10.2217/fmb.12.74
- Chou H.C., Lee C.Z., Ma L.C., Fang C.T., Chang S.C., Wang J.T. Isolation of a chromosomal region of Klebsiella pneumoniae associated with allantoin metabolism and liver infection. Infect. Immun. 2004; 72(7): 3783-92. https://doi.org/10.1128/IAI.72.7.3783-3792.2004
- Bagley S.T. Habitat association of Klebsiella species. Infect. Control. 1985; 6(2): 52-8. https://doi.org/10.1017/s0195941700062603
- Huijbers P.M.C., Blaak H., De Jong M.C.M., Graat E.A.M., Vandenbroucke-Grauls C.M.J.E., De Roda Husman A.M. Role of the environment in the transmission of antimicrobial resistance to humans: a review. Environ. Sci. Technol. 2015; 49(20): 11993-2004. https://doi.org/10.1021/acs.est.5b02566
- Bréchet C., Plantin J., Sauget M., Thouverez M., Talon D., Cholley P., et al. Wastewater treatment plants release large amounts of extended-spectrum beta-lactamase-producing Escherichia coli into the environment. Clin. Infect. Dis. 2014; 58(12): 1658-65. https://doi.org/10.1093/cid/ciu190
- Ram B., Kumar M. Correlation appraisal of antibiotic resistance with fecal, metal and microplastic contamination in a tropical Indian river, lakes and sewage. npj Clean Water. 2020; 3: 3. https://doi.org/10.1038/s41545-020-0050-1
- Khan F.A., Hellmark B., Ehricht R., Söderquist B., Jass J. Related carbapenemase-producing Klebsiella isolates detected in both a hospital and associated aquatic environment in Sweden. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2018; 37(12): 2241-51. https://doi.org/10.1007/s10096-018-3365-9
- Mcarthur J.V., Tuckfield R.C. Spatial patterns in antibiotic resistance among stream bacteria: effects of industrial pollution. Appl. Environ. Microbiol. 2000; 66(9): 3722-6. https://doi.org/10.1128/aem.66.9.3722-3726.2000
- Graham D.W., Olivares-Rieumont S., Knapp C.W., Lima L., Werner D., Bowen E. Antibiotic resistance gene abundances associated with waste discharges to the Almendares River near Havana, Cuba. Environ. Sci. Technol. 2011; 45(2): 418-24. https://doi.org/10.1021/es102473z
- Lepuschitz S., Schill S., Stoeger A., Pekard-Amenitsch S., Huhulescu S., Inreiter N., et al. Whole genome sequencing reveals resemblance between ESBL-producing and carbapenem resistant Klebsiella pneumoniae isolates from Austrian rivers and clinical isolates from hospitals. Sci. Total Environ. 2019; 662: 227-35. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2019.01.179
- Atmani S.M., Messai Y., Alouache S., Fernandez R., Estepa V., Torres C., et al. Virulence characteristics and genetic background of ESBL-producing Klebsiella pneumoniae isolates from wastewater. Fresenius Environ. Bull. 2015; 24(1): 103-12.
- Runcharoen C., Moradigaravand D., Blane B., Paksanont S., Thammachote J., Anun S., et al. Whole genome sequencing reveals high-resolution epidemiological links between clinical and environmental Klebsiella pneumoniae. Genome Med. 2017; 9(1): 6. https://doi.org/10.1186/s13073-017-0397-1
- Surleac M., Czobor Barbu I., Paraschiv S., Popa L.I., Gheorghe I., Marutescu L., et al. Whole genome sequencing snapshot of multi-drug resistant Klebsiella pneumoniae strains from hospitals and receiving wastewater treatment plants in Southern Romania. PLoS One. 2020; 15(1): e0228079. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0228079
- Barati A., Ghaderpour A., Chew L.L., Bong C.W., Thong K.L., Chong V.C., et al. Isolation and characterization of aquatic-borne Klebsiella pneumoniae from tropical estuaries in Malaysia. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2016; 13(4): 426. https://doi.org/10.3390/ijerph13040426
- Mohammed E.S., Flayyih M.T. Detection of rmpA and magA genes and hypermucoviscosity phenotype in Klebsiella pneumoniae isolated from water samples in compare with clinical isolates. Curr. Res. Microbiol. Biotechnol. 2018; 6(1): 1424-30.
- Ko W.C., Paterson D.L., Sagnimeni A.J., Hansen D.S., Von Gottberg A., Mohapatra S., et al. Community-acquired Klebsiella pneumoniae bacteremia: global differences in clinical patterns. Emerg. Infect. Dis. 2002; 8(2): 160-6. https://doi.org/10.3201/eid0802.010025
Дополнительные файлы
